细胞冻存是细胞保存的主要方法之一。利用冻存技术将细胞置于下196℃液氮中低温保存，可以使细胞暂时脱离生长状态而将其细胞特性保存起来，这样在需要的时候再复苏细胞用于实验。而且适度地保存一定量的细胞，可以防止因正在培养的细胞被污染或其他意外事件而使细胞丢种，起到了细胞保种的作用。

　　除此之外，还可以利用细胞冻存的形式来购买、寄赠、交换和运送某些细胞。细胞冻存时向培养基中加入保护剂——终浓度5%~15%的甘油或二甲基亚砜(DMSO)，可使溶液冰点降低，加之在缓慢冻结条件下，细胞内水分透出，减少了冰晶形成，从而避免细胞损伤。标准冷冻速度开始为-1到-2℃/min，当温度低于-25℃时可加速，到-80℃之后可直接投入液氮内(-196℃)。 目前常用的保护剂为二甲亚砜(DMSO)和甘油，它们对细胞无毒性，分子量小，溶解度大，易穿透细胞。 实验材料 仪器：液氮罐、冻存管(塑料螺口专用冻存管或安瓿瓶)、离心管、吸管、离心机等。 试剂：0.25%胰酶、培养基、含保护剂的培养基(即冻存液) 附：冻存液配制：培养基加入甘油或DSMO，使其终浓度达5-20%。保护剂的种类和用量视不同细胞而不同。配好后4℃下保存。
　　实验步骤
　　1、消化细胞，将细胞悬液收集至离心管中。
　　2、1000rpm离心10分钟，弃上清液。
　　3、沉淀加含保护液的培养，计数，调整至5×106/ml左右。
　　4、将悬液分至冻存管中，每管1ml。
　　5、将冻存管口封严。如用安瓿瓶则火焰封口，封口一定要严，否则复苏时易出现爆裂。
　　6、贴上标签，写明细胞种类，冻存日期。冻存管外拴一金属重物和一细绳。
　　7、按下列顺序降温：室温→4℃(20分钟)→冰箱冷冻室(30分钟)→低温冰箱(-30℃1小时)→气态氮(30分钟)→液氮。
　　注意：操作时应小心，以免液氮冻伤。液氮定期检查，随时补充，绝对不能挥发干净，一般30立升的液氮能用1～1.5月。